Titulación de aminoácidos

Titulación de aminoácidos



OBJETIVO.

Objetivo didáctico.
Observar la curva de titulación de un aminoácido y practicar la volumetría potenciométrica.

Objetivo experimental. Determinar los puntos de equivalencia y los valores de pKa de un aminoácido, por medio de titulación potenciométrica, para identificarlo.

INTRODUCCION.
Titulación.
La titulación es un método que consiste en la cuantificación de una solución de una sustancia por medio de la reacción al equilibrio, con otro compuesto cuya concentración y volumen se conocen.
Las titulaciones ácido-base se pueden realizar empleando compuestos indicadores del cambio de pH o mediante el uso de un potenciómetro. Los indicadores muestran el punto de neutralización cambiando de color. Si se emplea un potenciómetro, se pueden obtener los valores de pH de la solución que se esté titulando, al agregar pequeños volúmenes de titulante para, posteriormente, mediante una gráfica (pH vs volumen agregado) obtener el punto de equivalencia.


REACTIVOS Y SUSTANCIAS PREVIOS A LA SESION.
Preparación de soluciones.
Realice los cálculos para preparar 50 ml de las soluciones en agua:

Solución de ácido clorhídrico (HCl) 1.0 N (25 ml).
Solución de amino ácido polar y/o hidrofílico 0.05 N a pH 1.5 (50 ml).
Solución de hidróxido de sodio (NaOH) 0.012 N (50 ml).

MATERIALES Y EQUIPOS.

___Agitador magnético ½” x 5/16” 1
___Balanza analítica 1
___Botella lavadora con agua de 500 ml 1
___Bulbos para pipeta Pasteur 4
___Bureta de 50 ml 1
___Electrodo combinado para Hidrógeno 1
___Embudodetallelargo 1
___Espátula 1
___Espátula micro 1
___Matraces volumétricos de 25 ml 3
___Matraces volumétricos de 50 ml 2
___Parrilla magnética 1
___Pinzas para bureta 1
___Pipetas Pasteur 4
___Pipetas serológicas de 5 ml 3
___Potenciómetro 1
___Probeta de 50 ml 1
___Propipeta 1
___Soporte universal 1
___Termómetro -10 a 200 °C 1
___Vasos de precipitado de 30 ml 4
___Vasos de precipitado de 50 ml 6
___Vaso de precipitado de 100 ml 1
___Vaso de precipitado de 250 ml 1

REACTIVOS Y SUSTANCIAS.

___Acetona. (MW 58.08 g/mol).
___Ácido clorhídrico concentrado. (MW 36.47 g/mol).
___Agua destilada. (MW 18.016 g/mol).
___Bicarbonato de sodio. (MW 84.00 g/mol).
___Etanol. (MW 46.07 g/mol).
___Fenolftaleína. (MW 318.31 g/mol).
___Hidróxido de sodio. (MW 40.01 g/mol).
___Solución pH 1.5 de aminoácido 0.05 M.
___Solución estándar pH 4.
___Solución estándar pH 7.

PROCEDIMIENTO.

Equipo de protección.
Ojos.
___Anteojos de policarbonato o monogógles.

Piel.
___Guantes de neopreno para ácidos.
___Ropa de algodón.

Respiratorio.
___Respirador con filtro para ácidos (Código amarillo).
___Maneje los ácidos en campana para vapores.
___No respire los vapores.

Precauciones especiales.
___Baño de ojos disponible.
___Regadera de seguridad disponible.
___Extinguidor de polvo químico, CO2 o gas halón (Tipo ABC).
___Lave abundantemente después de usar los reactivos.

Experimento.
___Colóquese ropa de algodón para protección (bata).
___Revise que las llaves de gas estén cerradas.
___Revise que las llaves de agua estén cerradas.
___Revise que las llaves de aire comprimido estén cerradas.
___Revise que los contactos eléctricos estén libres.
___Revise que los interruptores de luz del laboratorio estén encendidos.
___Revise que los extractores de aire estén encendidos.
Preparación de soluciones.
___Revise que la Acetona esté en la campana.
___Revise que el Ácido clorhídrico concentrado esté en la campana.
___Revise que el Agua destilada esté sobre la mesa.
___Revise que el Bicarbonato de sodio esté sobre la mesa.
___Revise que el Etanol esté sobre la mesa.
___Revise que la Fenolftaleína esté sobre la mesa.
___Revise que el Ftalato ácido de potasio esté sobre la mesa.
___Revise que el Hidróxido de sodio esté sobre la mesa.
___Revise que el Naranja de metilo esté sobre la mesa.
___Revise que la solución de aminoácido 0.05 N esté sobre la mesa.
___Colóquese los guantes de neopreno.
___Lave el material con agua corriente y detergente.
___Enjuague el material con agua destilada.
___Seque el material con franela o con papel absorbente.
___Seque los guantes de neopreno con franela o con papel absorbente.
___Colóquese anteojos de policarbonato o monogógles.
___Conecte el electrodo para hidrógeno al potenciómetro.
___Conecte el potenciómetro al tomacorriente.
___Tome un vaso de precipitados de 30 ml.
___Etiquete el vaso de 30 ml con el nombre pH 4.
___Destape el frasco de solución pH 4.
___Vierta 10 ml de solución pH 4 en el vaso pH 4.
___Tape el frasco de solución pH 4.
___Tome un vaso de precipitados de 30 ml.
___Etiquete el vaso de 30 ml con el nombre pH 7.
___Destape el frasco de solución pH 7.
___Vierta 10 ml de solución pH 7 en el vaso pH 7.
___Tape el frasco de solución pH 7.
___Tome un vaso de precipitados de 30 ml.
___Coloque el vaso pH 7 sobre la parrilla magnética.
___Introduzca el agitador magnético en el vaso pH 7.
___Agite suavemente la solución en el vaso pH 7.
___Mida la temperatura de la solución pH 7 en el vaso.
___Ajuste la temperatura del potenciómetro.
___Descubra el bulbo del electrodo.
___Coloque el vaso de precipitados de 250 ml bajo el electrodo.
___Con la botella lavadora lave generosamente el electrodo.
___Seque al tacto con papel higiénico el electrodo.
___Introduzca el bulbo del electrodo para hidrógeno en el vaso pH 7.
___Cuide no golpear el electrodo con el agitador magnético.
___Coloque en "pH" el potenciómetro.
___Ajuste el pH del potenciómetro a 7 con la perilla "calibrar".
___Apague la parrilla magnética.
___Extraiga el electrodo para hidrógeno.
___Coloque el vaso de precipitados de 250 ml bajo el electrodo.
___Con la botella lavadora lave generosamente el electrodo.
___Seque al tacto con papel higiénico el electrodo.
___Retire el vaso pH 7 de la parrilla magnética.
___Con el espátula retire el agitador magnético del vaso pH 7.
___Enjuague el termómetro, el espátula y el agitador con agua destilada.
___Seque el espátula y el agitador magnético.
___Coloque el vaso pH 4 sobre la parrilla magnética.
___Introduzca el agitador magnético en el vaso pH 4.
___Agite suavemente la solución en el vaso pH 4.
___Mida la temperatura de la solución pH 4 en el vaso.
___Introduzca el bulbo del electrodo para hidrógeno en el vaso pH 4.
___Cuide no golpear el electrodo con el agitador magnético.
___Coloque en "pH" el potenciómetro.
___Ajuste el pH del potenciómetro a 4 con la perilla "slope" (pendiente).
___Apague la parrilla magnética.
___Extraiga el electrodo para hidrógeno.
___Coloque el vaso de precipitados de 250 ml bajo el electrodo.
___Con la botella lavadora lave generosamente el electrodo.
___Seque al tacto con papel higiénico el electrodo.
___Retire el vaso pH 4 de la parrilla magnética.
___Con el espátula retire el agitador magnético del vaso pH 4.
___Enjuague el espátula y el agitador magnético con agua destilada.
___Seque el espátula y el agitador magnético.
___Tome un vaso de precipitados de 100 ml.
___Etiquete el vaso de 100 ml con el nombre bicarbonato 10 %.
___Ajuste la balanza a 0.0 g.
___Coloque el vaso bicarbonato 10 % sobre la balanza.
___Tare el vaso bicarbonato 10 %.
___Destape el frasco de bicarbonato de sodio.
___Tome un espátula.
___Pese 10 g de bicarbonato de sodio en el vaso bicarbonato 10 %.
___Tape el frasco de bicarbonato de sodio.
___Limpie el espátula.
___Conecte la parrilla magnética.
___Coloque el vaso bicarbonato 10 % sobre la parrilla magnética.
___Introduzca el agitador magnético en el vaso bicarbonato 10 %.
___Con la probeta graduada mida 90 ml de agua destilada.
___Agregue los 90 ml de agua destilada al vaso bicarbonato 10 %.
___Agite vigorosamente para homogeneizar el bicarbonato de sodio.
___Apague la parrilla magnética.
___Con el espátula retire el agitador del vaso bicarbonato 10 %.
___Enjuague el espátula y el agitador magnético con agua destilada.
___Seque el espátula y el agitador magnético.
___Tome un vaso de precipitados de 50 ml.
___Etiquete el vaso de 50 ml "hidróxido de sodio" 0.012 N.
___Ajuste la balanza a 0.0 g.
___Coloque el vaso hidróxido de sodio 0.012 N sobre la balanza.
___Tare el vaso hidróxido de sodio 0.012 N.
___Tome un espátula.
___Destape el frasco de hidróxido de sodio.
___Pese _____ g de hidróxido de sodio en el vaso hidróxido de sodio 0.012 N.
___Tape el frasco de hidróxido de sodio.
___Lave el espátula con agua destilada.
___Seque el espátula con la franela.
___Coloque el vaso hidróxido de sodio 0.012 N sobre la parrilla.
___Introduzca el agitador magnético en el vaso hidróxido de sodio 0.012 N.
___Con la probeta graduada mida 45 ml de agua destilada.
___Agregue los 45 ml de agua destilada al vaso hidróxido de sodio 0.012 N.
___Agite vigorosamente para disolver el hidróxido de sodio.
___Apague la parrilla magnética.
___Retire el vaso hidróxido de sodio 0.012 N de la parrilla.
___Con el espátula retire el agitador del vaso hidróxido de sodio.
___Enjuague el espátula y el agitador magnético con agua destilada.
___Seque el espátula y el agitador magnético.
___Tome un matraz volumétrico de 50 ml.
___Etiquete el matraz volumétrico de 50 ml con el nombre hidróxido de sodio.
___Vierta la solución de hidróxido de sodio en el matraz hidróxido de sodio.
___Afore con agua destilada el matraz volumétrico hidróxido de sodio.
___Tape y agite el matraz volumétrico de 50 ml hidróxido de sodio.
___Vierta la solución de hidróxido de sodio en el vaso hidróxido de sodio 0.012 N.
___Enjuague y lave el matraz volumétrico de 50 ml hidróxido de sodio.

___Tome un vaso de precipitados de 30 ml.
___Etiquete el vaso de 30 ml con el nombre ácido clorhídrico 1.0 N.
___Con la probeta graduada mida 20 ml de agua destilada.
___Agregue los 20 ml de agua destilada al vaso ácido clorhídrico 1.0 N.
___Colóquese el respirador.
___Coloque dentro de la campana el vaso ácido clorhídrico 1.0 N.
___Coloque el vaso bicarbonato 10 % en la campana de extracción.
___Encienda la campana de extracción.
___Tome una pipeta serológica de 5 ml.
___Moje ligeramente el exterior de la boca de la pipeta serológica de 5 ml.
___Tome una propipeta.
___Inserte la boca de la pipeta serológica de 5 ml en la propipeta.
___Haga presión negativa en la propipeta.
___Destape el frasco de ácido clorhídrico 1.0 N.
___Dentro de la campana, mida _____ ml de ácido clorhídrico con la pipeta de 5 ml.
___Dentro de la campana, deslice el ácido clorhídrico en el vaso ácido clorhídrico 1.0 N.
___Tape el frasco de ácido clorhídrico 1.0 N.
___Enjuague la pipeta serológica de 5 ml con agua corriente.
___Retire la pipeta serológica de la propipeta.
___Iguale las presiones en la propipeta.
___Coloque el vaso ácido clorhídrico 1.0 N sobre la parrilla.
___Introduzca el agitador magnético en el vaso ácido clorhídrico 1.0 N.
___Agite gentilmente para disolver el ácido clorhídrico.
___Apague la parrilla magnética.
___Retire el vaso ácido clorhídrico 1.0 N de la parrilla magnética.
___Con el espátula retire el agitador del vaso ácido clorhídrico 1.0 N.
___Enjuague el espátula y el agitador magnético con agua destilada.
___Seque el espátula y el agitador magnético.
___Tome un matraz volumétrico de 25 ml.
___Etiquete el matraz volumétrico de 25 ml con el nombre ácido clorhídrico 1.0 N.
___Vierta la solución de ácido clorhídrico en el matraz ácido clorhídrico 1.0 N.
___Afore con agua destilada el matraz volumétrico ácido clorhídrico 1.0 N.
___Tape y agite el matraz volumétrico ácido clorhídrico 1.0 N.
___Vierta la solución de ácido clorhídrico 1.0 N en el vaso ácido clorhídrico 1.0 N.
___Enjuague y lave el matraz volumétrico ácido clorhídrico 1.0 N.
___Tome un vaso de precipitados de 30 ml.
___Etiquete el vaso de 30 ml con el nombre ácido clorhídrico 0.1 N.
___Con la probeta graduada mida 20 ml de agua destilada.
___Agregue los 20 ml de agua destilada al vaso ácido clorhídrico 0.1 N.
___Coloque dentro de la campana el vaso ácido clorhídrico 0.1 N.
___Tome una pipeta serológica de 5 ml.
___Moje ligeramente el exterior de la boca de la pipeta serológica de 5 ml.
___Tome una propipeta.
___Inserte la boca de la pipeta serológica de 5 ml en la propipeta.
___Haga presión negativa en la propipeta.
___Tome el vaso de ácido clorhídrico 1.0 N.
___Dentro de la campana, mida 2.5 ml de ácido clorhídrico 1.0 N con la pipeta de 5 ml.
___Dentro de la campana, deslice el ácido clorhídrico 1.0 N en el vaso ácido clorhídrico 0.1 N.
___Enjuague la pipeta serológica de 5 ml con agua corriente.
___Retire la pipeta serológica de la propipeta.
___Iguale las presiones en la propipeta.
___Coloque el vaso ácido clorhídrico 0.1 N sobre la parrilla.
___Introduzca el agitador en el vaso ácido clorhídrico 0.1 N.
___Agite gentilmente para disolver el ácido clorhídrico.
___Apague la parrilla magnética.
___Retire el vaso ácido clorhídrico 0.1 N de la parrilla magnética.
___Con el espátula retire el agitador del vaso ácido clorhídrico 0.1 N.
___Enjuague el espátula y el agitador magnético con agua destilada.
___Seque el espátula y el agitador magnético.
___Tome un matraz volumétrico de 25 ml.
___Etiquete el matraz volumétrico de 25 ml con el nombre ácido clorhídrico 0.1 N.
___Vierta la solución de ácido clorhídrico en el matraz ácido clorhídrico 0.1 N.
___Afore con agua destilada el matraz volumétrico ácido clorhídrico 0.1 N.
___Tape y agite el matraz volumétrico ácido clorhídrico 0.1 N.
___Vierta la solución de ácido clorhídrico 0.1 N en el vaso ácido clorhídrico 0.1 N.
___Enjuague y lave el matraz volumétrico ácido clorhídrico 0.1 N.
___Tome un vaso de precipitados de 30 ml.
___Etiquete el vaso de 30 ml con el nombre ácido clorhídrico 0.01 N.
___Con la probeta graduada mida 20 ml de agua destilada.
___Agregue los 20 ml de agua destilada al vaso ácido clorhídrico 0.01 N.
___Coloque dentro de la campana el vaso ácido clorhídrico 0.01 N.
___Tome una pipeta serológica de 5 ml.
___Moje ligeramente el exterior de la boca de la pipeta serológica de 5 ml.
___Tome una propipeta.
___Inserte la boca de la pipeta serológica de 5 ml en la propipeta.
___Haga presión negativa en la propipeta.
___Tome el vaso de ácido clorhídrico 0.1 N.
___Dentro de la campana, mida 2.5 ml de ácido clorhídrico 0.1 N con la pipeta de 5 ml.
___Dentro de la campana, deslice el ácido clorhídrico 0.1 N en el vaso ácido clorhídrico 0.01 N.
___Enjuague la pipeta serológica de 5 ml con agua corriente.
___Retire la pipeta serológica de la propipeta.
___Iguale las presiones en la propipeta.
___Coloque el vaso ácido clorhídrico 0.01 N sobre la parrilla.
___Introduzca el agitador en el vaso ácido clorhídrico 0.01 N.
___Agite gentilmente para disolver el ácido clorhídrico.
___Apague la parrilla magnética.
___Retire el vaso ácido clorhídrico 0.01 N de la parrilla magnética.
___Con el espátula retire el agitador del vaso ácido clorhídrico 0.01 N.
___Enjuague el espátula y el agitador magnético con agua destilada.
___Seque el espátula y el agitador magnético.
___Tome un matraz volumétrico de 25 ml.
___Etiquete el matraz volumétrico de 25 ml con el nombre ácido clorhídrico 0.01 N.
___Vierta la solución de ácido clorhídrico en el matraz ácido clorhídrico 0.01 N.
___Afore con agua destilada el matraz volumétrico ácido clorhídrico 0.01 N.
___Tape y agite el matraz volumétrico ácido clorhídrico 0.01 N.
___Vierta la solución de ácido clorhídrico 0.01 N en el vaso ácido clorhídrico 0.01 N.
___Enjuague y lave el matraz volumétrico ácido clorhídrico 0.01 N.
___Tome un vaso de precipitados de 50 ml.
___Etiquete el vaso de 50 ml con el nombre del aminoácido ________.
___Ajuste la balanza a 0.0 g.
___Coloque el vaso del aminoácido ________ sobre la balanza.
___Tare el vaso del aminoácido ________.
___Tome un espátula.
___Destape el frasco del aminoácido ________.
___Pese _____ g del aminoácido ________ en el vaso del aminoácido ________.
___Tape el frasco del aminoácido ________.
___Lave el espátula con agua destilada.
___Seque el espátula con la franela.
___Coloque el vaso del aminoácido ________ sobre la parrilla.
___Introduzca el agitador en el vaso del aminoácido ________.
___Con la probeta graduada mida 40 ml de agua destilada.
___Agregue los 40 ml de agua destilada al vaso del aminoácido ________.
___Agite vigorosamente para disolver el aminoácido ________.
___Apague la parrilla magnética.
___Agite suavemente la solución del aminoácido ________.
___Mida la temperatura de la solución del aminoácido ________.
___Ajuste la temperatura del potenciómetro.
___Introduzca el bulbo del electrodo para hidrógeno en el vaso del aminoácido ________.
___Cuide no golpear el electrodo con el agitador magnético.
___Libere el control "stand by" a "pH" en el potenciómetro.
___Mida el pH del aminoácido ________.
___Tome el ácido clorhídrico 0.01 N.
___Tome una pipeta Pasteur.
___Moje ligeramente la parte exterior de la boca de la pipeta Pasteur.
___Tome un bulbo para pipeta Pasteur.
___Coloque el bulbo en la boca de la pipeta Pasteur.
___Con el bulbo coloque una gota de clorhídrico 0.01 N en la solución del aminoácido ________.
___Si no cambia el pH con otra pipeta Pasteur agregue una gota de clorhídrico 0.1 N.
___Si no cambia el pH con otra pipeta Pasteur agregue una gota de clorhídrico 1.0 N.
___Ajuste lentamente el pH de la solución del aminoácido ________ hasta pH 1.5.
___Coloque el control en "stand by" en el potenciómetro.
___Apague la parrilla magnética.
___Extraiga el electrodo para hidrógeno.
___Coloque el vaso de precipitados de 250 ml bajo el electrodo para hidrógeno.
___Con la botella lavadora lave generosamente el electrodo para hidrógeno.
___Seque al tacto con papel higiénico el electrodo para hidrógeno.
___Retire el vaso del aminoácido ________ de la parrilla magnética.
___Con el espátula retire el agitador del vaso del aminoácido ________.
___Enjuague el espátula y el agitador magnético con agua destilada.
___Seque el espátula y el agitador magnético.
___Tome un matraz volumétrico de 50 ml.
___Etiquete el matraz volumétrico de 50 ml con el nombre del aminoácido ________.
___Vierta la solución del aminoácido ________ en el matraz del aminoácido ________.
___Afore con agua destilada el matraz volumétrico del aminoácido ________.
___Tape y agite el matraz volumétrico del aminoácido ________.
___Vierta la solución del aminoácido ________ en el vaso del aminoácido ________.
___Enjuague y lave el matraz volumétrico del aminoácido ________.
___En un vaso de 30 ml prepare 10 ml de Fenolftaleína 1 % en etanol.
___En un vaso de 30 ml prepare 10 ml de Naranja de metilo 0.1 % en agua.
Titulación del aminoácido.
___Monte las pinzas para bureta en el soporte universal.
___Coloque la bureta en las pinzas para bureta, sobre la parrilla magnética.
___Cierre la llave de la bureta.
___Coloque el embudo de talle largo sobre la bureta.
___Vierta el hidróxido de sodio 0.012 N en la bureta.
___Coloque el vaso de hidróxido de sodio 0.012 N bajo la bureta.
___Purgue la punta de la bureta.
___Tome un vaso de precipitados de 50ml.
___Con la probeta mida 25 ml de solución del aminoácido _________.
___Vierta los 25 ml del aminoácido ________ en el vaso de 50 ml.
___Coloque el vaso del aminácido ________ sobre la parrilla.
___Introduzca el agitador en el vaso del aminoácido ________.
___Agite gentilmente la solución del aminoácido ________.
___Agregue una gota de solución de fenolftaleína a la solución del aminoácido.
___Introduzca el electrodo en el vaso del aminoácido.
___Mida y anote el pH de la solución del aminoácido ________.
___Agregue 0.5 ml de hidróxido de sodio 0.012N.
___Mida y anote el pH de la solución del aminoácido ________.
___Repita hasta agregar 25 ml totales de hidróxido de sodio 0.012 N.
___Retire el vaso de la parrilla.
___Con el espátula retire el agitador del vaso.
___Enjuague el espátula y el agitador magnético con agua destilada.
___Seque el espátula y el agitador magnético.
___Tome un vaso de precipitados de 50ml.
___Con la probeta mida 25 ml de solución del aminoácido _________.
___Vierta los 25 ml del aminoácido ________ en el vaso de 50 ml.
___Coloque el vaso del aminácido ________ sobre la parrilla.
___Introduzca el agitador en el vaso del aminoácido ________.
___Agite gentilmente la solución del aminoácido ________.
___Agregue una gota de solución de fenolftaleína a la solución del aminoácido.
___Introduzca el electrodo en el vaso del aminoácido.
___Mida y anote el pH de la solución del aminoácido ________.
___Agregue 0.5 ml de hidróxido de sodio 0.012N.
___Mida y anote el pH de la solución del aminoácido ________.
___Repita hasta agregar 25 ml totales de hidróxido de sodio 0.012 N.
___Retire el vaso de la parrilla.
___Con el espátula retire el agitador del vaso.
___Enjuague el espátula y el agitador magnético con agua destilada.
___Seque el espátula y el agitador magnético.
Forma de desechar
___Neutralice lentamente los residuos ácidos (ver Forma de desechar).
___Deseche los residuos ácidos (ver Forma de desechar).
___Neutralice lentamente los residuos básicos (ver Forma de desechar).
___Deseche los residuos básicos (ver Forma de desechar).
___Deseche los residuos orgánicos(ver Forma de desechar).
___Lave y enjuague el material.
___Seque el material con papel o con franela.
___Guarde y entregue el material y los equipos.
___Revise que no haya reactivos en la campana.
___Apague la campana de extracción.
___Revise que no haya reactivos sobre la mesa.
___Revise que la mesa esté limpia y seca.
___Revise que las llaves de gas estén cerradas.
___Revise que las llaves de agua estén cerradas.
___Revise que las llaves de aire comprimido estén cerradas.
___Revise que los contactos eléctricos estén libres.
___Revise que los extractores de aire estén apagados.
___Revise que los interruptores eléctricos del laboratorio estén apagados.
___Retírese el equipo de protección personal.
___Guarde el equipo de protección personal.
___Revise que la luz del laboratorio esté apagada.

Forma de desechar.
___Neutralice los residuos ácidos con bicarbonato de sodio.
___Neutralice los residuos alcalinos con bicarbonato de sodio. Deseche.

OBSERVACIONES.
Elabore una gráfica de volúmen de hidróxido de sodio añadido vs pH.
Identifique el o los puntos de equivalencia del aminoácido.
Identifique el o los valores de pKa del aminoácido.
Con los valores de pKa identifique al aminoácido.

REFERENCIAS.
Cole-Parmer 97-98. Cole-Parmer Instrument Company, Vernon Hills, IL. 1996.
Hackett, W.J. y Robbins, G.P. 1982. Manual Técnico de Seguridad. Representaciones y Servicios de Ingeniería, S.A., México.
The Merk Catalogue. Merk KgaA, Darmstadt, BRD. 1996.
The Merk Index. 12th ed. Merk KgaA, Darmstadt, BRD. 1996.

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© Raúl Alva*, México, 5/III/2001.
*Profesor-Investigador de la Universidad Autónoma Metropolitana-Iztapalapa, México.